Дослідження антигенпрезентуючих клітин  в брижі кишки в нормі і при спайковому процесі

Оксана Кущ; Анастасія Пайдаркіна

Питання морфології і топографії дендритних клітин брижі тонкої кишки, їх кількість, наявність у нормі та при прогресуючих спайкових процесах вивчені недостатньо і постають актуальним питанням імуноморфології. Метою роботи було виявлення і визначення функціональної активності антигенпрезентуючих клітин методом лектинової гістохімії за допомогою лектинів арахісу та сочевиці у нормі та при спайкових процесах. Перелік використаних методів: морфометричний, лектингістохімічний, статистичний. Вперше за допомогою лектинової гістохімії із використанням лектинів сочевиці і сої виявлено функціонально активні та імунологічно незрілі антигенпрезентуючі клітини в структурі лімфоїдних кластерів брижі тонкої кишки. Встановлено закономірність між прогресуванням процесів спайкоутворення та кількістю антигенпрезентуючих клітин. Виявлено кореляційні зв'язки між дендритними клітинами та кількістю імунологічно незрілих лімфоцитів і В-лімфоцитів, що поглибило уявлення про функціональні механізми локальної ланки вродженого імунітету. Проаналізовано тенденцію зростання імунологічно незрілих лімфоцитів і В-лімфоцитів на тлі збільшення антигенпрезентуючих клітин. Результати показали, що активація дендритних клітин в тканинах брижі викликає збільшення імунологічно незрілих лімфоцитів, з яких в подальшому походять B-лімфоцити і ініціюють місцеву імунну відповідь. Підвищення частоти виявлення PNA+- і LCA+- антигенпрезентуючих клітин вказує на підвищену імунореактивність лімфоїдних кластерів. Дане дослідження розподілу антигенпрезентуючих клітин доповнює розуміння структури лімфоїдої тканини, пов'язаної з серозними оболонками, а також жироасоційованих лімфоїдних скупчень, і підкреслює зв'язок між вродженим і адаптивним імунітетом в черевній порожнині

очеревина; дендритні клітини; імунітет; лектини; щури; лімфоцит; гістологічні зміни

[1] Kashyap AS, Fernandez-Rodriguez L, Zhao Y, Monaco G, Trefny MP, Yoshida N, et al. GEF-H1 signaling upon microtubule destabilization is required for dendritic cell activation and specific anti-tumor responses. Cell Rep. 2019;28(13):3367–80.e8. DOI: 10.1016/j.celrep.2019.08.057

[2] Repáraz D, Hommel M, Navarro F, Llopiz D. The role of dendritic cells in the immune niche of the peritoneum. Int Rev Cell Mol Biol. 2022;371:1–14. DOI: 10.1016/bs.ircmb.2022.04.012

[3] Yun TJ, Igarashi S, Zhao H, Perez OA, Pereira MR, Zorn E, et al. Human plasmacytoid dendritic cells mount a distinct antiviral response to virus-infected cells. Sci Immunol. 2021;6(58):eabc7302. DOI: 10.1126/sciimmunol.abc7302

[4] Jawanda MK, Narula R, Mathur N, Singh J, Singh D. Non-Hodgkin's lymphoma of mandible in a young male. J Pierre Fauchard Acad (India Sect). 2017;31(1):18–21. DOI: 10.1016/j.jpfa.2017.01.001

[5] Simplicien M, Barre A, Benkerrou Y, Van Damme EJM, Rougé P, Benoist H. The T/Tn-specific Helix pomatia lectin induces cell death in lymphoma cells negative for T/Tn antigens. Cancers. 2021;13(17):4356. DOI: 10.3390/cancers13174356

[6] Liu M, Silva-Sanchez A, Randall TD, Meza-Perez S. Specialized immune responses in the peritoneal cavity and omentum. J Leukoc Biol. 2021;109(4):717–29. DOI: 10.1002/JLB.5MIR0720-271RR

[7] Jackson-Jones LH, Bénézech C. FALC stromal cells define a unique immunological niche for the surveillance of serous cavities. Curr Opin Immunol. 2020;64:42–49. DOI: 10.1016/j.coi.2020.03.008

[8] van Uden D, Boomars K, Kool M. Dendritic cell subsets and effector function in idiopathic and connective tissue disease-associated pulmonary arterial hypertension. Front Immunol. 2019;10:11. DOI: 10.3389/fimmu.2019.00011

[9] Volyanska AG, Syvokonyuk OV. Comparative analysis of barium sulfate and talc in strength of adhesive process in female rats. Integr Anthropol. 2012;1(19):58–61.

[10] Reznikov O. General ethical principles of experiments on animals. Endocrinology. 2003;8(1):142–45.

[11] Lutsyk A. Lectins in histochemistry. Lviv: Higher School Publishing House near Lviv University of Technology; 1989. 144 p.

[12] Paidarkina A, Kushch O. Peritoneal remodeling and changes in its lymphoid component in experimental modeling of adhesion disease in rats. SciRise Biol Sci. 2024;1(38):10–16. DOI: 10.15587/2519-8025.2024.301278

[13] Paidarkina AP, Kushch OG. Peculiarities of the distribution of PNA+-immunologically immature lymphocytes in the intestinal mesentery of rats in normal conditions and during the adhesion process. In: Paidarkina AP, Kushch OG, editors. Materials of the All-Ukrainian Scientific and Practical Conference with International Participation “Morphogenesis and Regeneration” (IV Zhutaev Readings); 2024; Poltava. Poltava, Ukraine: Poltava State Medical University; 2024. P. 47–54.

[14] Ksyonz I, Kostylenko Y, Liakhovskyi V, Konoplitskyi V, Maksimovskyi V. Milky spots in the greater omentum. Actual Probl Modern Med: Bull Ukr Med Stomatol Acad. 2023;23(2):135–40. DOI: 10.31718/2077-1096.23.2.2.135

[15] Wang AW, Prieto JM, Cauvi DM, Bickler SW, De Maio A. The greater omentum – a vibrant and enigmatic immunologic organ involved in injury and infection resolution. Shock. 2020;53(4):384–90. DOI: 10.1097/SHK.0000000000001428

[16] Suen JL, Chang Y, Shiu YS, Hsu CY, Sharma P, Chiu CC, et al. IL-10 from plasmacytoid dendritic cells promotes angiogenesis in the early stage of endometriosis. J Pathol. 2019;249(4):485–97. DOI: 10.1002/path.5339

[17] Lamendour L, Deluce-Kakwata-Nkor N, Mouline C, Gouilleux-Gruart V, Velge-Roussel F. Tethering innate surface receptors on dendritic cells: A new avenue for immune tolerance induction?. Int J Mol Sci. 2020;21(15):5259. DOI: 10.3390/ijms21155259

[18] Sancho D, Reis e Sousa C. Signaling by myeloid C-type lectin receptors in immunity and homeostasis. Annu Rev Immunol. 2012;30:491–29. DOI: 10.1146/annurev-immunol-031210-101352

[19] Binnewies M, Mujal AM, Pollack JL, Combes AJ, Hardison EA, Barry KC, et al. Unleashing type-2 dendritic cells to drive protective antitumor CD4+ T cell immunity. Cell. 2019;177(3):556–71.e16. DOI: 10.1016/j.cell.2019.02.005

[20] Laginha PA, Arcoverde FVL, Riccio LGC, Andres MP, Abrão MS. The role of dendritic cells in endometriosis: A systematic review. J Reprod Immunol. 2022;149:103462. DOI: 10.1016/j.jri.2021.103462

[21] Qiaomei Z, Ping W, Yanjing Z, Jinhua W, Shaozhan C, Lihong C. Features of peritoneal dendritic cells in the development of endometriosis. Reprod Biol Endocrinol. 2023;21(1):4. DOI: 10.1186/s12958-023-01058-w

[22] Gardner A, de Mingo Pulido Á, Ruffell B. Dendritic cells and their role in immunotherapy. Front Immunol. 2020;11:924. DOI: 10.3389/fimmu.2020.00924